Делу время

Скорость поступления в кровь изотопов, введенных внутрикожно, подкожно, внутримышечно, в ткань органа, определяют по времени полуудаления, полурезорбции, которое вычисляют по полулогарифмическому графику, отражающему экспоненциальную зависимость, резорбции от времени.

Изотопы различают по скорости резорбции, которая зависит от химических свойств элемента.

На основании собственных наблюдений на брыжейке крысы мы избрали на этом объекте следующую прижизненную классификацию приносящих микрососудов: артериолы — от 100 до 30 мкм в диаметре, метартериолы — от 25 до 15 мкм, прекапилляры 15—10 мкм. В устье прекапилляров, отходящих от метартериол, располагаются гладкомышечные клетки, образующие прекапиллярный сфинктер. Диаметр прекапиллярного сфинктера, если иметь в виду только устье (отверстие) прекапилляра, по нашим данным, составляет, как правило, не более 4—5 мкм. Столь малое отверстие по сравнению с диаметром эритроцитов (в среднем 7 мкм) и лейкоцитов (в среднем 12 мкм) приводит к тому, что первые при прохождении через сфинктер претерпевают значительную деформацию, а вторые нередко закупоривают отверстие на 1 — 10 с, т. е. на время, необходимое для преодоления устья, прерывая тем самым кровоток в прекапилляре и капиллярах.

Телевизионная микроскопия и микроденситометрия были использованы при изучении транскапиллярного обмена на микрососудах брыжейки лягушки. Микропипеткой в артериолу вводили метиленовый и патентный синий, а также альбумин, меченный синим Эванса.

Ко всем индикаторным веществам относится требование малой токсичности и максимальной индифферентности. Очевидно, что этому требованию в полной мере могут удовлетворить лишь собственные компоненты плазмы и тканевой жидкости.

Это третий компонент микроциркуляторного русла, который образован мелкими венулами, диаметром 15—20 мкм, возникающими от слияния венозных отделов капилляров. Мелкие венулы впадают в более крупные, образуя сложную систему с многочисленными анастомозами.

Количество прошедших через стенку микрососуда красителя флюорохрома, мечепного флюорохромом белка, декстрана или неокрашенного белка может быть измерено методом фотометрии в проходящем или отраженном свете. Для этого на микроскопе укрепляют фотометрическое устройство, позволяющее измерить оптическую плотность определенной площади, занятой красителем (проходящий свет), или интенсивность свечения флюоресцирующего белка или декстрана (отраженный свет).

В нашей лаборатории была создана установка для отведения биопотенциалов от микрососудов брыжейки крысы (А. М. Чернух, М. И. Тимкина, 1971). Для проведения экспериментов готовили металлические микроэлектроды из вольфрамовой проволоки диаметром 0,2 мм по методу, предложенному Hubel (1957), а также стеклянные — из стекла пирекс с диаметром кончика 0,8—1,5 мкм, заполненные 2,5 М растором хлористого калия.